Immunity | 肠-免疫-皮肤轴新发现!南方医科大学左大明等团队揭秘肠菌代谢物TMAO是特应性皮炎的“隐形推手”

特应性皮炎(AD)以Th2型免疫、IgE升高和皮肤屏障受损为特征。AD患者肠道菌群组成与健康人群存在显著差异,肠道菌群及其代谢物可经血液循环远程调控全身免疫反应,但其驱动皮肤Th2炎症的具体分子机制尚不明确。
2026年4月,南方医科大学左大明教授、马骊教授和孙乐栋教授团队在Immunity(IF30.6)杂志在线发表了题为“Intestinal dysbiosis exacerbates skin inflammation via microbial metabolite-driven Th2 cell differentiation”的研究论文,揭示了肠上皮TLR4缺失导致肠道菌群失调,增强菌群胆碱-三甲胺(TMA)转化,升高循环氧化三甲胺(TMAO)水平;TMAO通过直接结合蛋白磷酸酶5(PPP5)促进PPARγ去磷酸化激活,驱动Th2细胞分化,从而加重AD的全新“肠-免疫-皮肤”轴机制。

研究材料
AD患者与健康对照的粪便及血浆样本
中国汉族AD患者GWAS数据及UK Biobank队列数据
细胞(小鼠naive CD4+ T细胞、EL-4细胞、HEK293T细胞)
菌株(嗜黏蛋白阿克曼氏菌AKK)
模型小鼠
研究步骤
步骤1:GWAS联合GTEx分析锁定TLR4位点两个风险SNP,风险等位基因携带者TLR4转录水平显著降低;
步骤2:构建髓系及肠上皮细胞特异性TLR4敲除小鼠,经OVA(卵清蛋白)与MC903(卡泊三醇)两种AD模型证实仅肠上皮TLR4缺失加重AD;
步骤3:广谱抗生素清菌、皮肤局部清菌及粪菌移植实验证实,表型差异依赖肠道菌群而非皮肤菌群或肠屏障缺陷;
步骤4:16S及宏基因组发现敲除鼠Akk菌减少、黏蛋白下降;Akk菌灌胃可缓解AD”;
步骤5:非靶向和靶向代谢组学锁定胆碱-TMAO代谢异常;
步骤6:体内外证实TMAO直接促进Th2分化,抗IL-4中和抗体可阻断;TMAO不影响Th1/Th17及IMQ银屑病模型;
步骤7:转录-代谢通路分析锁定PPAR信号,CD4+ T细胞特异性PPARγ敲除完全消除TMAO/胆碱的促AD效应;
步骤8:分子实验证实TMAO直接结合PPP5的TPR结构域,增强PPARγ Ser112去磷酸化;PPP抑制剂fostriecin可在体内外阻断TMAO驱动的Th2扩增及胆碱加重的AD病理。

机制示意图
肠上皮TLR4缺失 → Akk菌↓/黏蛋白↓、CutC+菌(厚壁菌/变形菌)↑ → 胆碱→TMA转化↑ → 循环TMAO↑ → TMAO结合PPP5(TPR结构域) → PPP5磷酸酶活性↑ → PPARγ Ser112去磷酸化激活 → Th2分化↑(GATA3、IL-4/5/13) → IgE升高、皮肤炎症加重 → AD进展。
研究结果
1. 肠上皮TLR4通过肠道菌群调控AD发生发展
研究者利用1,012例中国汉族AD患者GWAS数据,发现TLR4位点两个SNP(rs12686163、rs10983744)与AD风险显著相关,风险等位基因携带者TLR4转录水平降低。构建髓系及肠上皮特异性TLR4敲除小鼠,经OVA和MC903两种AD模型证实仅肠上皮TLR4缺失加重AD(皮炎评分、皮肤厚度、搔抓行为、肥大细胞浸润及血清IgE均升高)。广谱抗生素清菌消除表型差异,而皮肤清菌无影响;FMT实验证实供体基因型决定疾病严重程度,且肠屏障功能未受损。综上,肠上皮TLR4通过肠道菌群抑制AD发生。

图1 肠上皮TLR4通过肠道菌群调控AD发展
2. 肠上皮TLR4缺失重塑AD小鼠肠道菌群与代谢谱
16S及宏基因组测序显示,TLR4fl/flVil-Cre AD小鼠疣微菌门及AKK显著减少,伴随肠道黏蛋白Mucin1/Mucin2表达下降;AD患者粪便中AKK菌同样减少,且与肠道TLR4基因表达正相关。口服AKK菌可缓解OVA诱导的皮肤炎症和IgE升高。粪便非靶向代谢组学显示两组代谢谱分离,胆碱衍生物(乙酰胆碱、甜菜碱、L-肉碱、棕榈酰-L-肉碱)在敲除鼠粪便中富集,提示肠上皮TLR4缺失改变肠道菌群胆碱代谢。

图2 肠上皮TLR4塑造AD小鼠肠道菌群与代谢物谱
3. 胆碱-TMAO代谢轴驱动AD严重程度
膳食胆碱补充加重小鼠AD,UK Biobank显示最高胆碱摄入三分位人群AD风险较最低组升高30%,且呈剂量依赖关系。机制上,敲除鼠粪便TMA及血清TMAO升高(靶向代谢组学),胆碱裂解酶CutC表达上调;补充AKK菌或CutC抑制剂FMC可降低TMAO并缓解AD。临床验证显示AD患者血浆TMAO升高,且与SCORAD、IgE正相关,与AKK菌丰度及肠上皮TLR4表达负相关。

图3 胆碱-TMAO代谢轴驱动AD严重程度
4. TMAO促进Th2细胞极化与AD发病
AD患者血浆TMAO与IL-4正相关。体外TMAO浓度依赖性地促进naive CD4+ T细胞向Th2分化,上调IL-4、GATA3及Th2因子表达,增强STAT6磷酸化并激活IL-4启动子,等摩尔胆碱无此效应。体内TMAO升高AD小鼠Th2比例、血清IL-4及皮损Th2因子,抗IL-4抗体可阻断该效应。TMAO不影响Th1/Th17,亦不加重IMQ银屑病模型,而AKK菌补充抑制AD相关Th2反应,提示该轴具有疾病与通路特异性。

图4 TMAO促进Th2细胞极化与AD发病
5. TMAO通过激活PPARγ增强Th2分化
TMAO处理Th2细胞转录及转录-代谢联合分析锁定PPAR信号为最显著变化通路。CD4+ T细胞特异性PPARγ敲除小鼠在OVA诱导下,无论是否补充胆碱,AD严重程度、IgE及Th2反应均与对照无差异,即PPARγ缺失完全消除胆碱/TMAO的促AD效应;体外敲除鼠naive CD4+ T细胞对TMAO无响应。PPARγ拮抗剂T0070907同样阻断TMAO增强的IL-4表达,确立PPARγ在TMAO-Th2轴中的核心介导地位。

图5 TMAO通过激活PPARγ增强Th2分化
6. TMAO直接结合PPP5促进PPARγ去磷酸化
GO富集分析提示去磷酸化通路激活,免疫印迹证实TMAO降低PPARγ Ser112磷酸化。系统筛选PPP家族磷酸酶锁定PPP5为TMAO主要靶点;分子对接显示TMAO结合于PPP5的TPR结构域与磷酸酶结构域界面。D9-TMAO免疫沉淀-质谱及co-IP验证二者直接互作,且TMAO增强PPP5-PPARγ复合物形成及PPP5催化活性。综上,TMAO作为PPP5分子激活剂,通过促进PPARγ去磷酸化驱动Th2分化。

图6 TMAO直接结合PPP5促进PPARγ去磷酸化
7. 药理学抑制PPP阻断胆碱/TMAO驱动的AD加重
PPP家族选择性抑制剂fostriecin在体外完全阻断TMAO诱导的PPARγ Ser112去磷酸化、Th2细胞分化及IL-4表达分泌;体内fostriecin处理显著减轻OVA诱导的皮肤炎症,并完全消除胆碱补充对AD的加重效应,血清IgE、Th2细胞比例及皮损Th2因子表达均恢复至对照水平。该结果验证了胆碱/TMAO-PPP5-PPARγ轴作为AD治疗靶点的可行性。

图7 Fostriecin阻断胆碱/TMAO驱动的AD加重
总结
研究首次建立“肠上皮先天免疫-菌群代谢物-皮肤Th2炎症”的完整因果链,确立TMAO-PPP5-PPARγ轴为AD的关键驱动机制;血浆TMAO有望成为AD严重程度的评估标志物,限制膳食胆碱、补充Akk菌、CutC抑制剂(FMC)及PPP抑制剂(fostriecin)均为潜在干预策略。该轴在人体中的因果层级、TMAO-PPP5精确结合界面及其对其他Th2驱动疾病的普适性仍需进一步验证。
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