祝贺!我司助力客户斩获Molecular Plant顶刊!山东农大庄焜扬团队揭秘番茄低温光合损伤调控机制!

低温胁迫(0–12℃)是制约全球作物生长和产量的重要环境因素。在番茄等喜温作物中,低温会严重损伤光合作用系统——从类囊体电子传递、碳同化循环到气孔导度调控均受抑制。当卡尔文-本森-巴萨姆(CBB)循环活性下降时,光驱动电子传递链产生的过剩电子会产生活性氧(ROS),引发光系统II和I的慢性光抑制。尽管植物已进化出多种转录因子介导的防御机制,但光合作用在低温下受损的分子机理及保护策略仍存在大量空白。
2026年7月7日,山东农业大学庄焜扬团队在国际植物科学顶刊Molecular Plant(IF 32.7)发表重磅研究论文“The SlbZIP30-SlbZIP51 module safeguards photosynthesis under chilling stress by coordinating nuclear transcriptional activation and chloroplast protein stabilization in tomato”。研究团队在番茄中鉴定出一个由双定位转录因子SlbZIP30和核质穿梭因子SlbZIP51构成的双重空间光保护模块:SlbZIP30在叶绿体中通过与SlLHCA1和SlTPI1互作稳定光合蛋白,同时在细胞核中与SlbZIP51形成异源二聚体激活 SlCPN60a1、SlTPI2 和 SlRBCS1 的转录。这一跨越叶绿体与细胞核的双重调控机制,为培育耐低温作物提供了全新的分子靶点和工程化策略。中科新生命有幸为该研究提供蛋白质组学检测与数据分析服务。

番茄野生型及各类转基因材料
TMT标记定量蛋白组、IP-MS/MS、转录组学(RNA-seq)、酵母双杂交(Y2H)、双分子荧光互补(BiFC)、荧光素酶互补成像(LCI)、Co-IP、EMSA凝胶迁移、ChIP-seq/ChIP-qPCR等。
SlbZIP30是番茄bZIP家族中唯一具有叶绿体转运肽(CTP,1–41位氨基酸)的成员。亚细胞定位显示,SlbZIP30-GFP同时定位于叶绿体和细胞核;叶绿体定位依赖N端CTP,核定位依赖Ser124位点磷酸化(S124A突变后核定位丧失)。低温下,SlbZIP30转录和蛋白水平均上升,且呈现动态分布:早期积累于细胞核,后期转向叶绿体。
功能验证表明,slbzip30 突变体在4℃处理12 h后严重萎蔫,相对电导率和ROS升高;过表达株系耐低温性增强。核定位缺失(S124A)或叶绿体定位缺失(ΔCTP)突变体仅能部分回补表型,证明双重定位缺一不可。光合参数显示,突变体净光合速率、PSII和PSI量子产量降至最低,而过表达株系维持最高;CO₂响应曲线证实SlbZIP30通过维持Rubisco和磷酸丙糖异构酶(TPI)活性保障碳同化。免疫印迹表明,过表达株系中Rubisco大亚基(RBCL)和小亚基(RBCS)积累量显著高于野生型,突变体中大幅下降。

图1 SlbZIP30保护低温胁迫下的光合作用
为解析机制,团队开展IP-MS/MS(中科新生命提供)与Y2H文库筛选联合分析,鉴定出4个重叠互作蛋白,包括SlTPI1和SlLHCA1。LCI和BiFC证实SlbZIP30与二者在叶绿体中直接互作,去除CTP后互作消失。
SlLHCA1是PSI外围天线蛋白,SlTPI1是CBB循环核心酶。低温下,突变体中SlLHCA1和SlTPI1蛋白水平显著下降,PSI活性和TPI活性严重受损。蛋白质组学进一步显示,过表达株系中碳代谢、碳固定和光合通路蛋白(RBCL、RBCS、TPI、CPN60α1及PSAF、PSAE、LHCA1等)显著上调,突变体中则下调。以上揭示叶绿体定位的SlbZIP30通过直接互作稳定光合蛋白,保护光合机构免受低温降解。

图2 SlbZIP30互作蛋白的筛选与验证
转录组显示碳固定相关基因(RBCS3B、RBCS1、GAPA、GAPB、TPI2、CPN60α1)和光系统相关基因在过表达株系中上调,在突变体中下调。但Y1H表明SlbZIP30不能直接结合这些启动子,提示需共调控因子。
IP-MS/MS和Y2H共同鉴定出SlbZIP51为核内关键互作伙伴。BiFC显示25℃时二者在细胞质互作,4℃转至细胞核;Co-IP证实Ser124对低温核互作至关重要。slbzip51 单突变和双突变体在低温下碳同化严重缺陷,Rubisco含量/活性和TPI活性显著降低。ChIP-seq鉴定SlbZIP51全基因组结合位点,KEGG富集显示碳代谢通路显著;de novo基序鉴定出VRE核心基序(AGCTGT/G)。ChIP-seq信号表明SlbZIP51在4℃下特异性结合 SlRBCS1、SlTPI2 和 SlCPN60a1 启动子,25℃无信号。Y1H、EMSA和ChIP-qPCR验证了直接结合。双荧光素酶实验显示,单独SlbZIP51激活三个靶基因启动子;共表达SlbZIP30增强激活;而S124A突变体仅产生与SlbZIP51单独相当活性。说明低温诱导SlbZIP51核转位后与SlbZIP30形成异源二聚体,协同激活靶基因转录。

图3 SlbZIP51在维持Rubisco水平中的关键作用
SlbZIP51-GFP在25℃定位于细胞质,低温处理30 min内转入细胞核,恢复常温后核信号消失,呈现可逆穿梭。
团队据此设计冷响应模块(CRM):将转录失活突变体SlbZIP51^(K187R)与GAL4-DNA结合域和VP16激活域融合,置于35S启动子;靶基因 ANT1(调控花青素合成)置于含GAL4元件的合成启动子驱动。低温诱导融合蛋白入核激活 ANT1,促进花青素积累;恢复常温后返回细胞质,激活终止。CRM转基因番茄在低温下花青素显著升高,Fv/Fm更高,ROS更低;RT-qPCR显示 ANT1 在低温处理1–3 h上升,恢复1 h回落。这证明了基于内源调控元件构建可编程、可逆温敏遗传回路的可行性。

图4 SlbZIP51通过VRE基序直接结合靶基因启动子并激活转录
SlbZIP30启动子含CACCGCC基序(DREB家族结合位点)。Y1H筛选出SlDREB26特异性结合该基序,EMSA和ChIP-qPCR验证特异性,双荧光素酶证实SlDREB26激活SlbZIP30启动子。SlDREB26本身受低温诱导,其RNAi株系低温下萎蔫加重,REC升高、Fv/Fm降低,RBCL/RBCS含量下降,同时SlbZIP30转录降低。这些结果确立了 “低温→SlDREB26→SlbZIP30” 的上游调控层级。

图5 SlDREB26作为SlbZIP30上游正调控因子的鉴定与功能验证
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